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上海晶風(fēng)生物科技有限公司

主營(yíng)產(chǎn)品:細(xì)胞,原代細(xì)胞,完全培養(yǎng)基,Elisa試劑盒,PCR試劑盒

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小鼠外周血血小板分離液試劑盒説明書
發(fā)布日期:2025/2/28 8:41:44發(fā)布人:上海晶風(fēng)生物科技有限公司

小鼠外周血血小板分離液試劑盒

規(guī)格200 mL/kit

保存:本產(chǎn)品對(duì)光敏感,應(yīng)該室溫避光儲(chǔ)存,保質(zhì)期 2 年。無菌開封后,保存于室溫。

 

組成:

 

 

小鼠外周血血小板分離液全血及組織稀釋液

細(xì)胞洗滌液

200mL

200mL

200mL

操作步驟:

 

 

  1. 取新鮮抗凝全血(EDTA、枸櫞酸鈉或肝素抗凝均可)或者去纖維蛋白血液,用等體積的全血及組織稀釋液或者PBS稀釋全血。
  2. 在離心管中加入至少5mL的分離液當(dāng)血液的體積大于等于3mL,加入2倍體積分離液,但二者的總體積不能超過離心管的三分之二,否則會(huì)影響分離效果)。
  3. 將稀釋后的血液平鋪到分離液液面上方,注意保持兩液面界面清晰可以使用巴氏德吸管吸取血液,然后將血液小心的平鋪于分離液上,因?yàn)閮烧叩拿芏炔町?,將形成明顯的分層界面。如果樣品較多,加樣的時(shí)間較長(zhǎng),在離心之前出現(xiàn)紅細(xì)胞成團(tuán)下沉屬正?,F(xiàn)象)
  4. 室溫,水平轉(zhuǎn)子200-250g ,離心15min血液的體積越大所需的離心力越大,離心時(shí)間越長(zhǎng),最佳的分離條件需摸索。
  5. 離心后,此時(shí)離心管中由上至下分為四層:最上層為富含血小板的血漿層;第三層為分離液層;分離液與血漿層之間是白色細(xì)胞層;第四層為紅細(xì)胞層。

 

  1. 小心的吸取富含血小板的血漿層到15mL潔凈的離心管中,加入10mLPBS或細(xì)胞洗滌液如果需要得到富含血小板的血漿, 可直接吸取,不再清洗)。500g,離心20min。
  2. 棄上清,5mLPBS或細(xì)胞洗滌液重懸血小板,500g,離心

20min

  1. 棄上清,重懸備用。

注意事項(xiàng):

  1. 開封前顛倒混勻,本分離液為無菌產(chǎn)品,為延長(zhǎng)分離液保存時(shí)間,請(qǐng)?jiān)跓o菌條件下啟封,避免微生物污染。。
  2. 分離液使用時(shí)應(yīng)始終保持室溫(18~25℃),如室內(nèi)溫度較低,可將分離液預(yù)熱。4℃或者是溫度較低的條件下離心,分離效果差。
  3. 吸取過多的血小板血漿層下層溶液會(huì)導(dǎo)致交界處白細(xì)胞混雜。
  4. 血液樣本最好為新鮮抗凝血(采血2 h以內(nèi)),避免冷凍和冷藏。

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

分離示意圖

 

富含血小板的血漿層細(xì)胞層

分離液層

 

紅細(xì)胞層

 
  1. 稀釋血液或洗滌細(xì)胞,不可使用含CaMg離子的緩沖液及培養(yǎng)液,降低細(xì)胞得率及純度。
  2. 部分塑料制品(如聚苯乙烯因其帶有的靜電作用,可能會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞掛壁,影響分離效果。
  3. 血液樣本的粘稠度或者是溫度差異,可能會(huì)影響分離效果,可以對(duì)血液稀釋或者是調(diào)節(jié)離心轉(zhuǎn)數(shù)和離心時(shí)間, 摸索最佳的分離條件。
  4. 不同動(dòng)物血液在不同比重分離液中的細(xì)胞離散系數(shù)及細(xì)胞帶電不同,用戶在制定分離液時(shí)應(yīng)提供所需分離液的比重、動(dòng)物種屬及被分離細(xì)胞的名稱。

參考文獻(xiàn):

  1. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand J Clin Lab Invest Suppl. 1968; 97: 7.

 

  1. Ting A, Morris PJ. A technique for lymphocyte preparation from stored heparinized blood. Vox Sang. 1971 Jun; 20(6): 561-3.
  2. Boyum A. Separation of Blood Leucocytes, Granulocytes and Lymphocytes Tissue Antigens. 1974; 4(4): 269-74.

 

  1. Weisbart RH, Webb WF, Bluestone R, Goldberg LS. A simplified method for lymphocyte separation. Vox Sang. 1972; 23(5): 478-80.
  2. Recalde HR. A simple method of obtaining monocytes in suspension. J Immunol Methods. 1984 Apr 13;69(1):71-7.

 

  1. BøyumA ,LøvhaugD ,TreslandL.Separation of leucocytes: improved cell purity by fine adjustments of gradient mediu m density and osmolality. Scand J Immunol. 1991 Dec; 34(6):697-712.
  2. Harris R, Ukaejiofo EO. Tissue typing using a routine one-step lymphocyte separation procedure. Br J Haematol. 1970 Feb; 18(2):229-35.

 


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